Казанской государственной академии ветеринарной медицины имени Н. Э. Баумана часть 2 Казань 2015



страница9/17
Дата26.06.2015
Размер2,69 Mb.
1   ...   5   6   7   8   9   10   11   12   ...   17

Результаты исследований показали, что у телят первой контрольной группы патогенные энтеробактерии и гемолитическая кишечная палочка не обнаружены, в содержимом кишечника преобладали бактерии группы кишечной палочки (10 ±0,05 lg КОЕ/г). Общее количество S. aureus (3±0,07 lg KOE/г), энтерококков (7±0,05 lg KOE/г), клостридий (7±0,06 lg КОЕ/г) и дрожжеподобных грибов (2±0,01 lg КОЕ/г) не превышало допустимых норм. Титр молочнокислых бактерий был на уровне 4±0,1 lg КОЕ/г, количество бифидобактерий было на более высоком уровне 11±0,08 lg KOE/г.

У телят второй группы, больных диспепсией с выраженными клиническими признаками, пробы фекалий были жидкой консистенции с характерным зловонным запахом, желтоватого цвета. В содержимом кишечника преобладали бактерии группы кишечной палочки 11±0,07 lg КОЕ/г. Во всех исследуемых пробах выделены культуры энтеропатогенных E. сoli в количестве 10±0,1 lg КОЕ/г, которые образовывали зону гемолиза на 5% кровяном агаре. Также в трех пробах выделяли Proteus mirabilis в количестве 4±0,07 lg КОЕ/г. Количество грибов из рода Candida было увеличено и составило 4±0,2 lg КОЕ/г. Титр лактобактерий был снижен (4±0,07 lg КОЕ/г), количество бифидобактерий находилось на уровне нижней физиологической нормы (8±0,3 lg KOE/г).



Заключение. Таким образом, в кишечнике телят, больных диспепсией, установлено высокое содержание энтеропатогенной кишечной палочки в ассоциации с протеем и дрожжеподобными грибами, на фоне низкого содержания лакто- и бифидобактерий.

ЛИТЕРАТУРА: 1. Андреева А.В., Николаева О.Н. Применение пробиотиков в животноводстве // Инновации, экобезопасность, техника и технологии в переработке сельскохозяйственной продукции: материалы Всероссийской научно-практической конференции с международным участием. Уфа, 2010. С.16-21. 2. Андреева А.В., Кадырова Д.В., Николаева О.Н. Восстановление микроэкологии кишечника // Перспективы инновационного развития АПК: материалы международной научно-практической конференции (в рамках XXIV международной специализированной выставки Агрокомплекс – 2014). Уфа, 2014. С. 242-246. 3. Джупина С.И. Этиология и профилактика массовых желудочно-кишечных болезней телят // Ветеринарная патология. 2003. № 2. С. 28-30. 4. Николаева О.Н., Андреева А.В., Арсланова Ю.Ф. Эффективность применения пробиотиков для профилактики желудочно-кишечных болезней новорожденных телят // Инновационному развитию АПК - научное обеспечение /Сборник научных статей Международной научно-практической конференции, посвященной 80-летию Пермской государственной сельскохозяйственной академии им. академика Д. Н. Прянишникова. В 5 томах. ФГОУ ВПО Пермская ГСХА им. Д. Н. Прянишникова; научная редколлегия: А. С. Семенов и другие. Пермь: ФГОУ ВПО Пермская ГСХА, 2010. С. 41-42.


ЭНТЕРОБИОЦЕНОЗ ПРИ ДИСПЕПСИИ ТЕЛЯТ
Бахтигараева Р.Б., Гафарова В.В., Шкапа Д.А.

Резюме


Изучен микробиоценоз кишечника новорожденных телят в норме и при диспепсии. Установлено, что при диспепсии телят происходит нарушение энтеробиоценоза в сторону преобладания энтеропатогенной кишечной палочки и микроскопических грибов.
THE ENTEROBIOCENOSIS AT DYSPEPSIA OF CALFS
Bahtigaraeva R.B., Gafarova V.V., Shkapa D.A.

Summary
The microbiocenosis of intestines of newborn calfs in norm is studied and at dyspepsia. It is established that at dyspepsia of calfs there is a violation of an enterobiocenosis towards prevalence of enteropatogenic colibacillus and microscopic mushrooms.


УДК 619:616:612:1123
Методика определения фагоцитарной активности крови кроликов
Богаткина А.Г., Медякова Н.А., Бадртдинова Л Р., Наджами С.

Руководитель - Гасанов А.С., профессор кафедры терапии и клинической диагностики с рентгенологией

Казанская государственная академия ветеринарной медицины
Ключевые слова: Анемия, фагоцитоз, кровь, кролик, иммунитет, резистентность, стафилококк.

Key words: anemia, phagocytosis, blood, rabbit, immunity, resistance, staphylococcus.
Анемия – заболевание полиэтиологической природы, и в каждом конкретном случае важно определить, с какой анемией имеем дело. Многие неблагополучия организма (инфекционные и паразитарные болезни и др.) выражаются в анемии, в частности, в снижении уровня гемоглобина и появления на шкурке дефекта белопухлости.

Естественная резистентность организма животных складывается из клеточных и гуморальных факторов защиты организма животных является фагоцитарная активность лейкоцитов, фагоцитарный индекс (индекс Райта) и число, а также фагоцитарная емкость крови.

Фагоцитоз (греч. Phago – пожираю, cytos – клетка) – это способность различных соединительно-тканных клеток – фагоцитов захватывать и переваривать микробные и животные клетки. Из клеток крови обладают фагоцитарной способностью полиморфноядерные клетки (микрофаги), макрофагическая система – ретикулоэндотелий печени, селезенки, костного мозга, надпочечников, лимфатических узлов, гистиоцитов, плазмоциты, мононуклеары крови.

Полиморфоядерные лейкоциты, большую часть которых составляют нейтрофилы, в периферической крови осуществляют защиту организма в процессе фагоцитоза, в В-клеточном иммунитете, а также при воспалении и тканевых повреждениях.

Функции нейтрофилов по охране организма от чужеродных антигенных воздействий включают: 1) хемотаксис и прилипание (адгезия) частиц к поверхности фагоцитов; 2)фагоцитоз – постепенное погружение (захват) частиц в клетку с последующим отделением части клеточной мембраны и образованием фагосомы; 3) слияние фагосомы с лизосомами; 4) ферментное переваривание захваченных частиц и удаление оставшихся микробных элементов.

В данном методе используется небольшое количество капиллярной крови, тсключается потеря активно фагоцитирующих клеток в результате прилипания к поверхности стекла. При контакте с иммунологически чужеродными частицами специализированные клетки крови (моноциты, гранулоциты) поглощают (фагоцитируют) и разрушают их внутриклеточными ферментами. Клетки кровисразу вступают в контакт с объектом фагоцитоза, что увеличивает достоверность и воспроизводимость результатов.



Реактивы. 1. Бактериальные стандарты, соответствующие 1-2 млрд микробных клеток в 1 мл;

2. Взвесь убитой культуры стафилоккока (взвесь готовят на физрастворе, стандартизируют на ФЭКе или КФК-2 при зеленом светофильтре в кюветах шириной 5 мм; оптическая плотность взвеси должна быть 0,28 при концентрации 1 млрд в 1 мл физраствора и 0,64 – при 2 млрд);

3. Физраствор, этиловый спирт, эфир, метиленовый зеленый, гематоксилин.

Оборудование. Термостат, холодильник, микроскоп, счетчик для подсчета элементов крови, камера Горяева, пробирки Видали, микропипетки, пастеровские пипетки, предметные стекла, ФЭК или КФК-2.

Ход исследования. В стеклянную пробирку наливают 0,2 мл крови с антикоагулянтом и приливают к ней 0,1 мл убитой культуры стафилококка в концентрации 1-2 млрд/мл. Смесь инкубируют в термостате в термостате при 37 в течении 1 часа. По окончании инкубации содержимое пробирок перемешивают и с помощью пастеровской пипетки переносят каплю смеси на предметное стекло, предварительно обезжиренное в смеси Никифорова и делают мазок. Мазок на воздухе высушивают при комнатной температуре, фиксируют в метиленовом спирте 3 минуты и красят гематоксилином. Краску сливают, мазки ополаскивают водой и просушивают фильтровальной бумагой. Учет полученных данных проводят под иммерсионной системой микроскопа при 60х10, 0Кх60.

В мазках под иммерсионной системе микроскопа считают все клетки белой крови (лейкоциты) пока не будет найдено 100 фагоцитов (нейтрофилы и моноциты). В каждой фагоцитирующей клетке учитывают число поглощенных микробов и состояние деградации микробной клетки, которая оценивается субъективно по характеру окраски, величине и степени набухания микробов.

Из 100 записанных подряд клеток выводится их процентное соотношение, т.е. лейг\кограмма. При найденным 100 фагоцитам определяют число клеток, участвующих в фагоцитозе (захвативших определенное количество микробов), или процент фагоцитоза (фагоцитарная активность – Ф.А.).

Общее число захваченных микробов, поделенное на количество фагоцитирующих клеток, дает фагоцитарный индекс (Ф.И.) – среднее количество микробов, захваченное одним фагоцитом.

Фагоцитарное число (Ф.Ч.) – отношение количества микробов, фагоцитированных нейтрофилами к общему числу нейтрофилов (100 клеток).

Выводы. «Ферсел» в дозе 83,3 мг/кг стимулирует процесс фагоцитоза и повышает фагоцитарную активность и фагоцитарное число.

ЛИТЕРАТУРА: 1. Гильмутдинов Р.Я., Курбанов Р.З.,// исследование крови животных. Методические аспекты –Казань Издательство ТГГИ,2000.240с. 2. Кондрашева М.Н. Биохимические основы физиологического влияния янтарной кислоты и общая характеристика ее действия на организм.//В кн.: Терапевтическое действие янтарной кислоты. – Пущино, 1976. с. 8-36. 3. Савронь Е.С. Биохимия животных. – М., 1966, 245 с.




Методика определения фагоцитарной активности крови кроликов
Богаткина А.Г., Медякова Н.А., Бадртдинова Л Р., Наджами С.

Резюме


«Ферсел» в дозе 83,3 мг/кг стимулирует процесс фагоцитоза и повышает фагоцитарную активность и фагоцитарное число.
THE METHOD OF DETERMINING THE PHAGOCYTIC ACTIVITY OF THE BLOOD OF RABBITS


Bogatkina A. G., Sedakova N., Badretdinova R. L., Nagami S.

Summary
"Parcel" dose 83,3 mg/kg stimulates the process of phagocytosis and phagocytic activity and phagocytic number.
УДК619:616.6:636.8
Физиотерапия при мочекаменной болезни котов



Ведерникова А.И, Жимбуева А.С.

Руководитель - Мантатова Н.В., профессор кафедры терапии и клинической диагностики

Бурятская государственная академия им. В. Р. Филиппова,

ФГБНУ Бурятский НИСХ


Ключевые слова: мочекаменная болезнь, терапия, коты, физиотерапия.

Key words: urolithiasis, therapy, cats, physiotherapy.
Сегодня, самым распространенными заболеваниями кошек незаразной этиологии органов мочевой системы являются: мочекаменная болезнь, спазм мочевого пузыря, почечная недостаточность.

Мочекаменная болезнь (Urolithiasis) – хронически протекающее заболевания, характеризующееся нарушением кислотно-щелочного равновесия, минерального, эндокринного и витаминного обменов и образованием мочевых камней, которые отлагаются в почечной лоханке, мочевом пузыре и уретре [1,2].

Причинами образования мочевых камней могут быть нарушение обмена веществ, кислотно-щелочного равновесия, физико-химического состояния защитных коллоидов, поддерживающих соли в растворенном состоянии, деятельности паращитовидных желез, недостаток в рационе ретинола и кальциферола, жесткость воды, импортные корма, подкормки, инфекции, и др. [1,2, 3, 4].

Методы физиотерапии нашли широкое применение для лечебных и профилактических целей при различных заболеваниях. Одной из особенностей физиотерапевтических процедур является то что, действуя на больной организм, придают ему извне энергию, которая может преобразовываться в другие виды энергии, что способствует усилению обменных процессов, усиливает защитные силы организма [4].



Материал и методы исследования. Исследования были проведены на котах, в возрасте 3-4 лет со средней живой массой 2-2,5 кг в условиях ветеринарной клиники Бурятской Государственной Сельскохозяйственной Академии имени В.Р. Филиппова и БУРНИСХ в период учебно-клинической практики.

Клинически мочекаменная болезнь у котов сопровождалась: болезненным мочеиспусканием, моча выделяется с трудом, небольшими порциями и даже каплями. Пальпация почек и мочевого пузыря в области поясницы и живота болезненна. Нижняя стенка живота выпячивается, напряжена. Моча мутная, с примесью мочевого песка, быстро выпадающего в осадок. Цвет мочи темный, с красноватым оттенком, вызванным примесью крови (рисунок 1).

Рисунок -1 Моча с примесью крови
Диагноз ставили с учетом рациона кормления, характерными клиническими признаками и результатов исследования мочи.

Собственные исследования. Физиотерапевтические процедуры в частности индуктотерапию, животным проводили стационарным аппаратом ДВК-2, который генерируют частоты колебания поля 13,56 млн. Гц с длинной волны 22,13м в течение 7 дней. Время проведения процедур составило: в первый день 5 минуты, во второй день 5,5, в третий день 6,0, в четвертый 6,5, в пятый день 7,0, в шестой 7,5, в седьмой 8,0 минут. На 7-е сутки у котов улучшилось общие состояние, улучшился аппетит, исчезли признаки болезненного мочеиспускания, при пальпации в области живота болезненность не отмечалась, в моче исчезли примеси крови.

Вывод. Лечебное действие индуктотермии связано с эффектом тепла, которое при мочекаменной болезни оказывает антиспастический, болеутоляющий, интенсифицирующий крово-и лимфообращение в тканях обмен веществ. Тепло проникает на большую глубину, усиливаются трофика тканей и фагоцитарная активность лейкоцитов.

Литература:1.Беркгофф П.К. Мелкие непродуктивные животные, болезни и лечение. М.: Аквариум, 2001. С. 387. 2.Динченко О.И. Уролитиаз кошек и собак в условиях мегаполиса// Ветеринария. - №9. – 2003. – С.49-52. 3.Денисенко В.Н., Круглова Ю.С., Кесарева Е.А. Болезни органов мочевыделительной системы у собак и кошек. – М.: Зоомедлит, 2009. – С. 96 с., ил. 4.Жимбуева А.С., Мантатова Н.В. Комплексная терапия уролитиаза у котов.- Материалы международной научно-практической конференции «Актуальные вопросы ветеринарной медицины.- Часть.- 2.- Улан-Удэ, 2013.- С.2. 5. Щербаков Г. Г., Яшин А. В., Курденко А. П., Мурзагулов К. Х. «Внутренние болезни животных».-Изд-во «Лань», 2014.- С. 87.
Физиотерапия при мочекаменной болезни котов

Ведерникова А.И, Жимбуева А.С.

Резюме
Лечебное действие индуктотермии связано с эффектом тепла, которое при мочекаменной болезни оказывает антиспастический, болеутоляющий, интенсифицирующий крово-и лимфообращение в тканях обмен веществ. Тепло проникает на большую глубину, усиливаются трофика тканей и фагоцитарная активность лейкоцитов
Physiotherapy in urolithiasis cats
Vedernicova A.I.

Summary
The therapeutic effect inductothermy due to the effect of heat, which in urolithiasis has antispastic, analgesic, intensifies blood and lymph circulation in the tissue metabolism. Heat penetrates to a greater depth, enhanced trophic tissues and phagocytic activity of leukocytes.

УДК 619:616-078:636.2
СРАВНИТЕЛЬНАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ КОПРОЛОГИЧЕСКИХ МЕТОДОВ ДИАГНОСТИКИ СТРОНГИЛЯТОЗОВ ЖВАЧНЫХ ЖИВОТНЫХ
Гайнетдинова Л.И.

Руководитель – Лутфуллин М.Х., профессор кафедры паразитологии и радиобиологии

Казанская государственная академия ветеринарной медицины
Ключевые слова: стронгилятозы, крупный рогатый скот, мелкий рогатый скот, диагностика.

Key words: strangelets, cattle, small cattle, diagnosis.
Введение. Стронгилятозы желудочно-кишечного тракта жвачных животных имеют широкое распространение во многих странах мира, в том числе в Российской Федерации [1] и наносят большой ущерб животноводству за счет постоянно прогрессирующего снижения продуктивности животных, вызывая у них тяжелые заболевания.

Кишечные стронгиляты способны вызывать заболевания как в имагинальной, так и в личиночной стадии. Нематоды желудочно-кишечного тракта чаще всего паразитируют у животных в ассоциации и оказывают общее патогенное воздействие на организм хозяина [2].

Решающее значение в комплексе лечебно-профилактических мероприятий при этих паразитозах имеет своевременная и безошибочная диагностика.

Исходя из этого, перед нами была поставлена задача, дать сравнительную оценку эффективности некоторым копрологическим методам диагностики стронгилятозов мелкого рогатого скота.



Материал, методы и результаты исследований. Копрологический исследовали пробы фекалий от 13 животных, в том числе 3-х голов крупного рогатого скота, 5 коз и 5 овец, принадлежащих частному подворью Гайнетдиновых.

Для исследования использовали следующие методы:

1. Метод Фюллеборна. 3-5 г помещали в стакан, заливали небольшим количеством флотационной жидкости, размешивали, затем добавляли 40-50 мл флотационной жидкости и процеживали через металлическое сито или марлю в чистый стакан. После взвесь отстаивали в течение 50-60 минут. Затем петлей снимали поверхностную пленку, переносили ее на предметное стекло для микроскопирования.

2. Техника выполнения усовершенствованного метода диагностики стронгилятозов у жвачных животных заключается в следующем. Пробу фекалий весом 3-5 г помещали в стакан, заливали небольшим количеством флотационной жидкости (NaCl+глицирин) размешивали, затем добавляли 40-50 мл этого раствора и процеживали через металлическое сито или марлю в один слой в чистый стакан. После взвесь отстаивали в течение 15-30 минут. Затем петлей снимали поверхностную пленку, переносили ее на предметное стекло для микроскопирования. Для выявлении яиц взвесь отстаивали 15 минут, а для обнаружения личинок – 30 минут.

3. Метод Котельникова Хренова с аммиачной селитрой. Технология этого метода такая же, как и метода Фюллеборна, но в качестве флотационной жидкости применяется нитрат аммония (техническая гранулированная аммиачная селитра).

Результаты изучения эффективности различных копрологических методов представлены в таблице.

Из таблицы видно, что при исследовании проб фекалий по методу Фюллеборна, среднее количество яиц в поле зрения микроскопа составило 6±0,22 яиц стронгилят.
Тапблица 1 - Эффективность некоторых методов диагностики стронгилятозов пищеварительного тракта у овец


№ п/п

Наименование метода

Состав флотацион-ной жидкости

Коли-чество ингреди

ентов, г/л



Время на 1 пробу, мин

Выявление

яиц стронгилят в поле зрения микроскопа

М±m


Личинок стронгилят в поле зрения микроскопа

М±m


1.

Фюллеборна

Насыщенный раствор натрия хлорида


420


50-60


6± 0,22


0




Усовершен-ствованный метод

1.насыщен

ный раствор натрия хлорида

2. глицирин


420

10


15-30

-


15 ± 0,95

-



35 ±0,75

-




Котельникова –

Хренова с нитратом свинца



Насыщенный раствор нитрата свинца


650


10


5±0,3


0

Усовершенствованный метод позволил выявить 15+0,95 яиц кишечных стронгилят в поле зрения микроскопа, а также, кроме яиц, и 35±0,75 личинок стронгилят. Метод Котельникова – Хренова позволил выявить в поле зрения микроскопа 5+0,3 яиц кишечных стронгилят.

Для исследования одной пробы фекалий методом Фюллеборна необходимо 50-60 минут, усовершенствованным методом Фюллеборна - 15-30 минут, методом Котельникова Хренова с аммиачной селитрой – 10 минут.

Заключение. Для диагностики стронгилятозов желудочно - кишечного тракта жвачных животных наиболее эффективным является усовершенствованный, с помощью которого можно выявить как яйца, так и личинки кишечных стронгилят. Классический метод Фюллеборна и Котельникова Хренова с аммиачной селитрой являются менее чувствительными чем усовершенствованный метод.

ЛИТЕРАТУРА: 1. Колесников, В.И. Эпизоотический процесс при стронгилятозах овец, меры борьбы и профилактики / В.И. Колесников. - Ставрополь. - 1995. - 64 с.; 2. Петров, Ю.Ф. Паразитоценозы и ассоциативные болезни сельскохозяйственных животных / Ю.Ф. Петров. - Л.: Агропромиздат, 1988. - 176 с.


СРАВНИТЕЛЬНАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ КОПРОЛОГИЧЕСКИХ МЕТОДОВ ДИАГНОСТИКИ СТРОНГИЛЯТОЗОВ ЖВАЧНЫХ ЖИВОТНЫХ
Гайнетдинова Л.И.

Резюме
Для диагностики стронгилятозов желудочно-кишечного тракта жвачных животных наиболее эффективным является усовершенствованный метод Фюллеборна, с помощью которого можно выявить как яйца, так и личинки кишечных стронгилят. Метод Фюллеборна и Котельникова Хренова менее чувствительны.


COMPARATIVE EFFECTIVENESS COPROLOGICAL DIAGNOSIS OF STRANGULATION RUMINANTS
Gaynetdinova L.I.

Summary
For diagnostics of strongilyatozov stomach - intestinal highway of ruminant zoons most effective is the improved method of Fyulleborna, by which it is possible to expose both eggs and larvae of intestinal strongilyat. Method of Fyulleborna and Kotel'nikova Khrenova less sensible.

УДК:619:636.5.087.8:658.512
Оценка эффективности кормовой добавки «Винивет-плюс» на курах яичного направления
Гайнетдинова Л.И.

Руководитель - Алимов А.М., профессор кафедры биологической и неорганической химии

Казанская государственная академия ветеринарной медицины
Ключевые слова: добавки, куры, продуктивность.

Key words: supplements, chickens, productivity.
Изыскание более дешевых и эффективных белково-минеральных источников для обогащения рационов птицы является актуальной проблемой [1]. Поэтому обеспечению полноценного кормления, включая макро- и микроэлементы, уделяется большое внимание [2].В этом аспекте определенный интерес представляет кормовая добавка «Винивет», которая по данным А.М.Алимова с соавт.(3,4) оказывает положительное влияние на организм птиц.

Целью данной работы явилось - дальнейшее совершенствование «Винивет» и оценка его влияния на организм кур яичного направления.



Материалы и методы. В состав «Винивет» включали дополнительно биомассу микроводорослей-хлореллы в количестве 0,1% от сухой массы и назвали этот препарат «Винивет-плюс». Опыты проводили на курах яичного кросса «Бованс». Курам, начиная с 135-дневного возраста, включали «Винивет-плюс» в количестве 0,5 % к общей массе кормовой смеси (опытная группа). Вторая группа (контрольная) получала основной рацион, обогащенной 0,5% «Винивет». Ежедневно учитывали яйценоскость и сохранность кур. Массу яйца устанавливали из средней выборки обоих групп в день их снесения. Сохранность поголовья определяют в конце месяца. Гематологические исследования проводили по общепринятой методике [5].
1   ...   5   6   7   8   9   10   11   12   ...   17


База данных защищена авторским правом ©zubstom.ru 2015
обратиться к администрации

    Главная страница